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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Parasitic diseases, including Leishmaniasis, Malaria and Chagas, are serious problems of public health worldwide, mainly in the Amazonian regions, and medicinal plants are an alternative in the treatment and control of these diseases. This work aims to evaluate eight medicinal plants from the Peruvian Amazon, which have been prepared into dichloromethane, ethanol and aqueous extracts, obtaining forty extract samples. The antiparasitic activity of each one of these samples was then evaluated in vitro promastigotes forms of different strains of Leishmania, epimastigotes of T. cruzi and Plasmodium falciparum trophozoites; the results showed that the extract from Unonopsis spectabilis was the most active against L. amazonensis, L. brazilensis and L. donovani with IC50 of 65.3, 54.2 and 24.5mg / ml respectively, with P. falciparum presenting IC50 of 10mg/ml and, however, proving to be inactive against T. cruzi.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>TRABAJOS DE INVESTIGACI&Oacute;N </b></font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align=center><font size="4" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Actividad antiparasitaria de plantas medicinales de la Amazonía Peruana</b></font></p>      <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align=center><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Antiparasitic activity of medicin                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                                        al plants from Peruvian Amazon</b></font></p>      <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Johann Satalaya R<sup>1</sup>,  Joahan Rojas U <sup>1</sup>, Braulio Ríos <sup>1</sup>, Maritza Grandez  <sup>1</sup>, Elsa Rengifo <sup>2</sup>, Grace Ruiz <sup>3</sup>, David Gutierrez <sup>3</sup>, Alberto Gimenez <sup>3</sup>, Ninoska Flores <sup>3</sup></b></font></p>      <p align=center>&nbsp;                     </p>      <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>1</sup>Facultad de Farmacia y Bioquímica, Universidad Nacional de la Amazonia Peruana, </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Sargento Lores 385.Iquitos, Perú. Telf: 51 65 232186.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>2</sup>Instituto de Investigaciones de la Amazonía Peruana, Av. José A. Quiñones km. 2.5 - Apartado Postal 784. Loreto, Perú. Telf: +51+65+265515 </font></p>      <p align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><sup>3</sup>Instituto de Investigaciones Fármaco Bioquímicas, Universidad Mayor de San Andrés. </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Av. Saavedra N° 2224, 2º Piso, Miraflores. La Paz, Bolivia.  Telf: 591 2 2229021</font></p>     <p align=center>&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Dirección para correspondencia: Ninoska Flores. Instituto de Investigaciones Fármaco Bioquímicas, Universidad Mayor de San Andrés. Av. Saavedra 2224, 2º Piso, Miraflores, La Paz-Bolivia.     <br> Telf: 591 2 2229021 int 106    <br> E mail: <a href="mailto:ninofq@hotmail.com">ninofq@hotmail.com</a></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align=justify><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Recibido para publicación en 31/07/09    <br> </font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Aceptado en 28/12/09</font></p>     <p align=justify>&nbsp;</p>     <p align=justify>&nbsp;</p> <hr noshade>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align=justify><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>RESUMEN </b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las enfermedades parasitarias, como la leishmaniasis,     la malaria y la Enfermedad de  Chagas, son algunos de los principales problemas     de salud pública a nivel mundial, principalmente en las regiones amazónicas. Las     plantas medicinales constituyen una alternativa, en la necesidad de buscar     nuevos tratamientos para estas enfermedades.  En el presente trabajo llevamos     adelante el estudio de ocho plantas medicinales de la amazonía peruana, de las     cuales se han preparado extractos diclorometánicos, etanólicos y acuosos, obteniéndose     40 extractos. De cada extracto se ha evaluado la actividad antiparasitaria in vitro contra formas     promastigotes de diferentes cepas de <i>Leishmania, </i>epimastigotes de <i>Tripanosoma     cruzi </i>y trofozoitos de <i>Plasmodium falciparum. </i>Los resultados     obtenidos muestran que el extracto de <i>Unonopsis spectabilis</i> es el más     activo, con una CI<sub>50 </sub>de 65.3, 54.2 y 24.5 mg/ml frente a <i>L. amazonensis, L. brazilensis </i>y <i>L.     donovani </i>respectivamente; y una CI<sub>50 </sub>de 10mg/ml frente a <i>P. falciparum</i>, sin embargo resultó inactivo frente a <i>T. cruzi</i>. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Palabras Clave: </b>extractos, plantas de la amazónica peruana, leishmanicida, tripanocida, antiplasmódica</font></p> <hr noshade>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Parasitic diseases, including Leishmaniasis, Malaria and Chagas, are serious problems of public health worldwide, mainly in the Amazonian regions, and medicinal plants are an alternative in the treatment and control of these diseases.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">This work aims to evaluate eight medicinal plants from the Peruvian Amazon, which have been prepared into dichloromethane, ethanol and aqueous extracts, obtaining forty extract samples. The antiparasitic activity of each one of these samples was then evaluated <i>in vitro</i>  promastigotes forms of different strains of <i>Leishmania</i>, epimastigotes of <i>T. cruzi</i> and <i>Plasmodium falciparum</i> trophozoites; the results showed that the extract from <i>Unonopsis spectabilis</i> was the most active against <i>L. amazonensis</i>, <i>L. brazilensis</i> and <i>L. donovani</i> with IC<sub>50</sub> of 65.3, 54.2 and 24.5mg / ml respectively, with <i>P. falciparum</i> presenting IC<sub>50</sub> of 10mg/ml and, however, proving to be inactive against <i>T. cruzi.</i></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Key Words: </b>extracts, plants of peruvian amazonic, leishmanicidal, trypanocidal and antiplasmodial activity</font></p>  <hr noshade>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Una de las preocupaciones de la humanidad en todos los tiempos, ha sido mantener el buen estado de su salud. Las sociedades amazónicas no han sido ajenas a esta preocupación. Desde su propia concepción de salud y enfermedad y la diversidad biológica de su entorno, cada uno de los pueblos indígenas amazónicos ha desarrollado conocimientos acerca de las propiedades curativas de las plantas. Heredera de este saber milenario, la población amazónica actual está, sin embargo, perdiendo estos conocimientos debido a los procesos de aculturación, la relación desventajosa entre el saber etnomédico y los sistemas oficiales de salud, la desaparición de los bosques, y la sobreexplotación de algunos de los recursos hasta el agotamiento<sup>1</sup>.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">La amazonía peruana comparte con los ocho países amazónicos, no sólo la más grande cuenca del planeta, sino también la mayor diversidad biológica del mundo. Se considera 3,140 especies útiles, de las cuales 1,044 tienen uso medicinal. La flora y fauna amazónica peruana constituye una de las más grandes dispensas y reservas de recursos terapéuticos. El hombre amazónico, a través de toda su historia, ha logrado identificar importantes especies que presentan compuestos biológicamente activos que han contribuido a aliviar  a curar diversas enfermedades, entre ellas la malaria<sup>2</sup>.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Según la Organización Mundial de la Salud (OMS), planta medicinal se define como el material derivado de una planta o una preparación con beneficios terapéuticos y otros beneficios sobre la salud del ser humano y que contiene materia prima o ingredientes procesados de una o más plantas. Hacia fines de la década de los 70, la OMS reconoce el rol de las plantas medicinales en la cura de diversas enfermedades que afectan al hombre<sup>3</sup>.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las enfermedades infecciosas tropicales constituyen un problema, para un gran porcentaje de seres humanos que habitan en zonas tropicales de nuestro planeta. Se evidencia una urgente necesidad en la búsqueda de alternativas terapéuticas de nuevas moléculas seguras efectivas, económicas y fáciles de administrar. </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Las poblaciones de nuestros países, y no solamente las amazónicas, se amparan cada vez más en el uso de la gran variedad de plantas con propiedades medicinales, complementando o solucionando, en gran medida, sus problemas de salud, pues el acceso a los medicamentos convencionales resulta difícil o imposible por su elevado costo<sup>4</sup>. Es por este motivo que en el Instituto de Investigaciones Fármaco Bioquímicas IIFB de la Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímicas de la Universidad Mayor de San Andrés, se están realizando este tipo de estudios, para que existan respaldos científicos del uso tradicional de las plantas. Consideramos de importancia el estudio de las plantas medicinales utilizadas como antiparasitarias por los pobladores de la amazonía peruana. Los conocimientos empíricos étnicos son un primer paso para la evaluación de la actividad antiparasitarias in vitro, y el estudio químico para identificar de  manera cualitativa  los  principales  metabolitos secundarios de  las especies vegetales, para posteriormente realizar estudios de actividad terapéutica<sup>5</sup> y poder elaborar fitofármacos que puedan contribuir a resolver en parte, los problemas de salud de la población económicamente menos favorecida y más alejada de la modernidad con limitadas posibilidades de curarse.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Es en esta línea que se realizó el estudio de la actividad antiparasitaria de los extractos de ocho plantas de la amazonía peruana, iniciando con el  proceso de la recolección, secado, y triturado de las plantas, posteriormente se prepararon diferentes extractos: maceración en diclorometano, etanol y extracción acuosa, los cuales posteriormente fueron evaluados por pruebas antiparasitarias in vitro. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>MATERIAL Y MÉTODOS</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Colección del material vegetal</b>.  El material vegetal se recolectó en la Reserva de Allpahuayo Mishana (73° 26&#8242;; 0.66&#8242;&#8242; W 04°00&#8242;&#8242;;   175&#8242;&#8242; S), Km 31.5 de la carretera Iquitos–Nauta en el Distrito de   San Juan, Provincia de Maynas del Departamento de Loreto, Iquitos, Perú; en   mayo de 2008. Muestras de herbario fueron depositadas en el Herbario del   Instituto de Investigaciones de la Amazonía Peruana (IIAP-Iquitos), y su identificación taxonómica se realizó mediante comparación con las muestras del Herbario de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional de la Amazonía Peruana. (Ver <a href="#t1">Tabla 1</a>)</font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p>  <h2 align=center><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t1"></a>Tabla 1. Usos tradicionales de especies medicinales de la amazonía peruana </font></h2>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img src="/img/revistas/rbfb/v17n2/a04_tabla01.gif" width="567" height="265"></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">          </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El     material recolectado fue secado a la sombra, a temperatura ambiente,     extendiendo en láminas grandes y removiéndolas diariamente, durante 7 días. El material seco fue pulverizado hasta obtener un polvo grueso (2 mm), para ser utilizado en la elaboración de los extractos.</font></p>     <div align="justify">       <p><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Preparación de         los extractos.</b> El material vegetal seco y finamente pulverizado, de cada         una de las especies, fue pesado (50 g) y posteriormente sometido a procesos de         maceración con diclorometano (CH<sub>2</sub>Cl<sub>2</sub>), etanol (EtOH) y agua         (H<sub>2</sub>O), en una proporción (1:10 p/v), durante 48 horas a temperatura         ambiente. Posteriormente, los macerados fueron filtrados y los residuos         obtenidos se concentraron a sequedad en rotaevaporador (Laborota 4000) acoplado         a una bomba de vacío (Vacum Bland), a una temperatura de 40° C (90 rpm), obteniéndose         de esta forma los extractos etanólicos, acuosos y diclorometánicos crudos libres     de solventes orgánicos (ver <a href="#e1">Esquema 1</a>).</font></p>       <p><a name="e1"></a></p>       <p align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Esquema 1. Esquema de extracci&oacute;n de plantas medicinales.</b></font></p>       <p align="center"><img src="/img/revistas/rbfb/v17n2/a04_esquema01.gif" width="473" height="520"></p>       <p align="center">&nbsp;</p> </div>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El  residuo vegetal (marco) del extracto de CH<sub>2</sub>Cl<sub>2</sub>,     fue procesado con etanol a temperatura ambiente por 48 h, posteriormente     filtrados y concentrados a sequedad, obteniéndose los extractos etanólicos EtOH     (2). El residuo vegetal obtenido del mismo fue nuevamente  sometido a una cocción     en agua durante 30 minutos y posteriormente filtrado, este extracto acuoso fue     congelado a -80° C y posteriormente liofilizados, obteniéndose el extracto acuoso  H<sub>2</sub>O (2).<b>&nbsp;</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>Estudios de actividad biológica. </b><i>Evaluación de la actividad Leishmanicida.</i> Las formas de promastigotes de <i>Leishmania: L. donovani </i>(cepa       PP75), <i>L. brasilensis </i>(cepa M 2903) y <i>L. amazonensis </i>(cepa PH8),       fueron cultivadas a 26°C en medio Schneider suplementado al 5% con suero bovino       fetal inactivo (56°C por 30 minutos). Los parásitos en fase de crecimiento       logarítmico fueron distribuídos en una microplaca de 96 pozos a una       concentración de 1x10<sup>6</sup> parásitos/ml y cada pozo fue tratado con       diferentes concentraciones de los extractos o fracciones durante 72 horas. La       actividad se evaluó mediante conteo óptico en microscopio, comparándose con el       control positivo y negativo. Pentamidina fue utilizado como fármaco control. Se       evaluaron concentraciones de los extractos de 100, 50 y 25 µg/ml; en caso de       que los productos presentasen actividad, se disminuyeron las concentraciones       hasta obtener la CI<sub>50</sub>; la prueba se realizó por triplicado. Los       resultados de actividad leishmanicida son expresados en valores de CI<sub>50</sub> (concentración de la droga que inhibe el 50% del desarrollo del parásito),       obtenido mediante una típica curva dosis respuesta (log de la concentración de   la droga vs % de inhibición)<sup>6</sup>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Evaluación de la actividad Tripanocida.</i> Las formas de epimastigotes de <i>T. cruzi, </i>cepa Tulahuen, fueron     cultivadas a 26°C en medio Liver Infusión Tryptose (LIT), suplementado     al 5% con suero bovino fetal inactivado (56°C por 30 minutos). Los parásitos en fase de crecimiento logarítmico se distribuyeron en placa de 96 pozos a una     concentración de 1x10<sup>6</sup> parásitos/ml. Cada pozo fue tratado con     diferentes concentraciones de los extractos: 100, 50 y 25 µg/ml, durante 72     horas. El vehículo utilizado para la disolución de los extractos fue DMSO, en     una concentración no superior al 1%, la prueba se realizó por triplicado. Los     datos se obtuvieron por conteo óptico con la utilización de un microscopio     invertido y comparándose con pozos control. La CI<sub>50 </sub>se calcula utilizando el programa Cricket Graph. Anfotericina B fue utilizada como fármaco de referencia<sup>6</sup>.</font></p>     <div align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Evaluación de la       actividad antiplamódica in vitro por el método del Cultivo Directo. </i>El método de cultivo continuo in vitro empleado fue       desarrollado en 1976 por Trager y Jensen<sup>7</sup>, de acuerdo a esta técnica       las formas parasitarias de <i>Plasmodium falciparum </i>cepa FCR3 resistente a       la cloroquina, fueron cultivadas en medio RPMI 1640 suplementada con suero al       10% y un hematocrito del 4% que se obtuvo añadiendo 200 µl de glóbulos rojos totales       (O Rh<sup>+</sup>) en 4,5 ml de RPMI 1640 suplementado con 0,5 ml de suero o       plasma (del mismo tipo de sangre) incubados a 37°C en un medio anaeróbico. Los extractos fueron disueltos en DMSO y la cloroquina en agua para       luego ser diluidos con el mismo medio obteniéndose las concentraciones       requeridas (0.10, 1 y 10µg/ml). Los cultivos fueron sincronizados de acuerdo al       método descrito por Lambros y Vanderberg<sup>8</sup>, en 1979; con una       parasitemia y un hematocrito del 1 y 2% respectivamente, estos se alícuotan con       un volumen de 100 µl además de 100 µl de los extractos en placas de 96 pozos, e       incubados a 37°C por 48 horas. Pasado el tiempo de incubación, se eliminó   completamente la fase superior al cultivo, para realizar un frotis del   sedimento de cada alveolo, fijando luego con metanol y realizando la tinción       con Giemsa, estas placas fueron observadas al microscopio, con lente de       inmersión x 100, contando glóbulos rojos no infectados, o libres (GRL) y   glóbulos rojos infectados (GRI), para obtener el porcentaje de inhibición:</font> </div>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rbfb/v17n2/a04_ecuacion01.gif" width="164" height="42">	</p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El cálculo de la Concentración Inhibitoria del 50% en la maduración de los esquizontes (CI<sub>50</sub>), se realiza por un método gráfico, programa Críquet Graph 1.3, considerándose como activos aquellos que presentaron CI<sub>50</sub> menor a 10 µg/ml. </font></p>  <h1 align="justify">&nbsp;</h1> <b><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">RESULTADOS</font></b>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la presente investigación, se han estudiado ocho plantas medicinales de la amazonía peruana, las cuales se listan en la <a href="#t1">Tabla 1</a>, en la que se presentan los nombres científicos, nombres comunes y el uso tradicional de las mismas. </font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De cada una de las especies vegetales se prepararon extractos orgánicos y acuosos (como se describe en la metodología), obteniéndose un total de 40 extractos: 8 extractos diclorometánicos (CH<sub>2</sub>Cl<sub>2</sub>), 16 extractos etanólicos (EtOH y EtOH (2)) y 16 extractos acuosos (H<sub>2</sub>O y H<sub>2</sub>O (2)). En la <a href="#t2">Tabla 2</a> se presentan los porcentajes de rendimientos obtenidos. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <h1 align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t2"></a>Tabla 2. Rendimiento de extracción de especies medicinales de la amazonía peruana.</font></h1>      <div align="center"><img src="/img/revistas/rbfb/v17n2/a04_tabla02.gif" width="565" height="815"></div>     <div align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><br clear=all>           </font> </div>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Según los resultados, se puede observar que se han obtenido mayores       porcentajes de rendimiento en los extractos EtOH, siendo el extracto de <i>X. parviflora</i> la que tiene el mayor peso con 3.52 g, seguidos de los extractos acuosos, a excepción de la especie <i>C. lecheri</i> en la que el extracto acuoso es el que tiene mayor cantidad 2.98 g que el extracto etanólico 1.27 g. </font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De los extractos H<sub>2</sub>O y H<sub>2</sub>O (2), la de <i>B. pentamera</i> presenta los mayores porcentajes de rendimiento 9.42% y 6.91% respectivamente, en comparación con los otros extractos acuosos obtenidos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En cuanto al rendimiento de los extractos diclorometánicos (CH<sub>2</sub>Cl<sub>2</sub>), las  de  <i>U. lobata  </i>y <i>U. spectabilis</i> presentaron porcentajes de       rendimiento de 3.66 y 3.05% respectivamente, siendo los más altos porcentajes respecto a los otros.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De todos los extractos obtenidos de cada especie de planta, 40     extractos (ver <a href="#t2">Tabla 2</a>), se ha evaluado la actividad antiparasitaria in vitro  contra formas promastigotes de diferentes  cepas de <i>Leishmania, </i>epimastigotes   de <i>T. cruzi </i>y trofozoitos de   <i>P.  falciparum.</i></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados de la actividad leishmanicida y tripanocida in vitro de  los cuarenta extractos se presentan en la <a href="#t3">Tabla 3</a>.</font></p>     <div align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b><br clear=all>   </b>        </font> </div> <h1 align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t3"></a>Tabla 3. Actividad leishmanicida y tripanocida  in vitro </font></h1>     <p align="center"><img src="/img/revistas/rbfb/v17n2/a04_tabla03.gif" width="562" height="767"></p>      <p align=justify>&nbsp;</p>     <p align=justify><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En la <a href="#t3">Tabla 3</a>, se observa que de todas las especies evaluadas la única       que presentó actividad leishmanicida in vitro contra las tres cepas de <i>Leishmania</i>   fue el extracto de CH<sub>2</sub>Cl<sub>2</sub> de <i>U. spectabilis, </i> con       una CI<sub>50 </sub> de 65.3,   54.2   y   24.5 mg/ml   frente a <i>L. amazonensis,  L. brazilensis </i>y     <i>L. donovani </i>respectivamente. Mientras que en el extracto EtOH,   presentó   actividad  frente a <i>L. brazilensis </i>con CI<sub>50 </sub>64.3 mg/ml y <i>L. donovani</i> con CI<sub>50 </sub>= 25.5 mg/ml; en ambos tipos de extractos la actividad es dos       veces más frente a <i>L. donovani</i>; ninguno de los extractos de <i>U.   spectabilis</i> presentó actividad frente a <i>T. cruzi.</i></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Otra especie de planta que presentó buena actividad y selectividad  es  el  extracto   etanólico  (EtOH),  de    <i>X. parviflora</i>     con    una  CI<sub>50  </sub>31.2   mg/ml   frente    <i>L. donovani</i>, mientras       que en el extracto diclorométanico, es selectivo frente a <i>L. brazilensis </i>con       una CI<sub>50  </sub>61.7 mg/ml; por       otra parte el extracto EtOH (2) presentó buena actividad frente a epimastigotes de <i>T.cruzi</i> con una CI<sub>50 </sub>56.3 mg/ml.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El extracto de <i>U. lobata</i> presentó actividad selectiva frente a <i>L. donovani</i> con  una CI<sub>50 </sub>de 41.9 y 63.9 mg/ml para el extracto EtOH y EtOH (2) respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">El extracto etanólico de <i>B. pentamera</i> presentó una CI<sub>50</sub>   de 58.3 mg/ml frente a epimastigotes de <i>T. cruzi, </i>mientras     que el extracto EtOH (2) presentó baja actividad frente a  promastigote de <i>L. donovani</i>  CI<sub>50 </sub>=  71.7 mg/ml.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><i>Evaluación de la actividad antiplasmódica in vitro. </i>Los resultados obtenidos de     la evaluación de la actividad antiplasmódica in vitro frente a <i>P. falciparum</i>, FCR-3   Cloroquina-resistente,  se muestran en  la <a href="#t4">Tabla 4</a>. </font></p>     <p align="justify">&nbsp;</p> <h1 align="center"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><a name="t4"></a>Tabla 4. Actividad antiplasmódica in vitrofrente a trofozoitos de <i>P. falciparum. </i></font></h1>      <p align=center><img src="/img/revistas/rbfb/v17n2/a04_tabla04.gif" width="539" height="787"></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">De todos los extractos evaluados la única especie que presentó   actividad antiplasmódica in vitro frente a <i>Plasmodium falciparum,</i> fue el extracto diclorometánico de <i>Unonopsis spectablis </i>con un CI<sub>50     </sub>10 &#956;g/ml, con un porcentaje de inhibición del 50%; todos los otros extractos presentaron una CI<sub>50 </sub>mayor a 10 &#956;g/ml.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>     <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>DISCUSIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Los resultados obtenidos en el presente trabajo, nos han mostrado que de los 40 extractos preparados de las ocho plantas,  el más activo es el extracto de diclorometano de <i>Unonopsis spectabilis</i>, frente a las diferentes cepas de <i>Leishmania</i> y a <i>P. falciparum</i>. Estudios previos de <i>U. spectabilis</i> han reportado el aislamiento de alcaloides 7,7&#8242;-bisdehidroaporfina<sup>9</sup>, pero sin ningún tipo de actividad biológica; del extracto de éter de petróleo de la corteza de <i>U.  buchtienii, </i>han reportado la presencia de esteroles y alcaloides, siendo el alcaloide más activo la liriodenina frente a <i>Leishmania major</i> y <i>L. donovani</i><sup>10</sup>; estos datos nos proporcionan una idea del tipo de compuestos que pueden ser responsables de la actividad biológica.</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">En conclusión, en este trabajo hemos presentado el estudio de la actividad leishmanicida, tripanocida y antiplasmódica de los extractos de ocho especies vegetales medicinales de la amazonía peruana. Los resultados    nos    muestran    que    el    extracto  de   <i>U. spectabilis</i> es la planta mas efectiva con actividad leishmanicida y antiplasmódica. Estudios posteriores estarán encaminados en el fraccionamiento bioguiado, al objeto de aislar los compuestos responsables de la actividad antiparasitaria. </font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">Al IIIFB y a la Facultad de Ciencias Farmacéuticas y Bioquímicas, de la UMSA; al Proyecto PCI-Iberoamérica  (A/010794/07, AECI); a la Red RIBIOFAR; y  al proyecto  X.5 “Búsqueda, Obtención y Evaluación de Nuevos Agentes Antiparasitarios” del CYTED (Subprogram X).</font></p>      <p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>&nbsp;</b></font></p>      <p align="justify"><font size="3" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">1. Brack  A. Plantas nativas utilizadas en el Perú en relación con la Salud humana. En: Salud y Población Indígena de la Amazonía. Quito: Impretec.1993; 2 : 61-175.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400001&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">2. Mejia K, Rengifo E. Plantas medicinales de uso popular en la Amazonía peruana. 2<sup>da </sup>ed. Lima: Instituto de Investigación de la Amazonía Peruana, Gobierno Regional de Loreto, Agencia Española de Cooperación Internacional;  2000. pp 286.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400002&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">3. World Health Organization. Traditional medicine - growing needs and potential. Bull  World Health Organ. 66 (2): 266-267, 1988.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400003&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">4. Gupta MP. 270 Plantas Medicinales Iberoamericanas. Santa Fé de Bogota, Colombia: Presencia; 1995: 413-20.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400004&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">5. Tagboto S, Townson S. Antiparasitic properties of medicinal plants and other naturally ocurring products. Adv Parasitol. 2001; 50: 199-295.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400005&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">6. Deharo E, Ruiz G, Vargas F, Sagua H, Ortega E, Rojas A, Jiménez A. Técnicas de laboratorio para la selección de sustancias antichagas y leishmanicidas. CYTED. La Paz, Bolivia: Prisa Ltda; 2004.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400006&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">7. Trager W, Jensen JB. Human malaria parasites in continuous culture. Science. 1976; 193: 673-675.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400007&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">8. Lambros C. Vanderberg JP. Synchronization of Plasmodium falciparum erythrocytic stages in culture. J Parasitol. 1979; 65(3): 418-420</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400008&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">9. Laprévote O, Roblot F, Hocquemiller R, Cavé A. Alkaloids of the Annonaceae 87. Azafluorenones from <i>Unonopsis spectabilis.</i> J Nat Prod. 1988; 51 (3): 555-561.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400009&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana, Arial, Helvetica, sans-serif">10. Waechter AI, Cavé A, Hocquemiller R,  Bories C, Muñoz V, Fournet A. <b> </b>Antiprotozoal activity of aporphine alkaloids isolated from <i>Unonopsis buchtienii</i> (Annonaceae). Phytother Res.  1999; 13 (2):&nbsp;175&nbsp;–&nbsp;177.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scieloOrg/php/reflinks.php?refpid=S1813-5363200900020000400010&pid=S1813-53632009000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');"></a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body><back>
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